Кафедра Химии природных соединений
Кафедра химии природных соединений (кафедра ХПС) была организована в конце 1965 г. выдающимся
ученым и государственным деятелем, членом-корр. РАН, профессором
Михаилом Алексеевичем Прокофьевым
на базе лаборатории химии белка кафедры органической химии Химического факультета.
С 1985 по 2010 год кафедрой руководил академик РАН, профессор Алексей Алексеевич Богданов,
который и сегодня ведет на кафедре активную научную и педагогическую деятельность.
НИИ Физико-Химической биологии им. А.Н.Белозерского
|
|
|
Заведующий кафедрой: член-корр. РАН профессор Донцова Ольга Анатольевна.
e-mail: dontsova@genebee.msu.su
телефон: 7(495)932-88-24
|
академик РАН, профессор Богданов Алексей Алексеевич
телефон: 7(495)939-31-43
e-mail: bogdanov@genebee.msu.su
|
Зам.заведующего кафедрой: к.х.н., доцент Бачева Анна Владимировна
e-mail: anbach@belozersky.msu.ru
телефон: 7(495)939-55-29
|
Кафедра ХПС состоит из трех лабораторий:
Лаборатория химии белка
Заведующий лабораторией член-корр. РАН Габибов
Александр Габибович
телефон: 7 (495) 939-54-35 |
|
Учебная работа
Лекционные курсы:
Общефакультетский курс "Химические основы
биологических процессов" (читается совместно
с кафедрой химической энзимологии).
Спецкурсы (IV-V курс):
- химии моно- и дисахаридов,
- химии белка
- химии нуклеиновых кислот,
- молекулярной биологии,
- генетической инженерии,
- физико-химическим методам анализа белков и
нуклеиновых кислот,
- клеточной биологии,
- биохимии.
Спецпрактикумы:
- "Экспериментальные методы исследования
белков и нуклеиновых кислот",
- общий практикум (IV курс),
- задачи по выбору (V курс).
- Проводится на базе Кафедры, НИИ ФХБ им. А.Н.
Белозерского и Института биоорганической химии
им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН.
Научная работа
Основные значимые результаты кафедры
- Разработана стратегия гибкого варьирования
структуры НК-лиганда, позволившая вводить в
определенную позицию углеводофосфатного остова
фосфорилдисульфидные, 2'-йодацетамидные и
2'-О-(2-оксоэтильные) группы, способные
специфически реагировать с остатками цистеина и
лизина регуляторных белков живой клетки. Изучен
механизм взаимодействия интегразы ВИЧ-1,
осуществляющей процесс включения вирусной ДНК в
геном инфицированной клетки, с синтетическими
ДНК-дуплексами. Найдена оптимальная структура
олигонуклеотидного ингибитора этого фермента,
не оказывающая влияния на функционирование
других ДНК связывающих белков. Исследована
функциональная активность in vitro РНК-полимеразы
E.coli, полученной с участием гетерологично
экспрессированных субъединиц. Предложен
экспресс-метод обнаружения токсичных
повреждений ДНК с помощью акустических волн.
Изучены фундаментальные аспекты точечных
мутаций ДНК, в основе которого лежит химическое
расщепление ассоциированных с ними
неканонических пар оснований. Показано, что
повреждение ДНК некоторыми стереоизомерами
загрязнителя окружающей среды и канцерогена,
бензо[а]пирена, препятствуют метилированию ДНК
прокариотическими ДНК метилтрансферазами Hhal и
Sssl. Выявлен механизм этих процессов и их
биологическая роль.
- Получены мутантные рибосомы, в которых
специфически изменена спираль 42 23S рРНК. Мутные
рибосомы выделены в чистом виде и исследованы в
системе in vitro. Методом химического пробинга
выявлена сеть конформационных изменений,
вызываемых мутацией. Сделаны предположения о
системе передачи сигнала между функциональными
центрами рибосомы в цикле элонгации трансляции.
Проведены работы по выделению комплексов тмРНК с
рибосомой, в которых транс-трансляция
остановлена на разных этапах прохождения тмРНК
через рибосому. Проведены исследования
теломеразы дрожжей, клонирован, выделен и
охарактеризован белок EST3, входящий в состав
теломеразного комплекса. Проведен направленный
мутагенез 16S рРНК для изучения устойчивости
клеток E.coli к тетрациклину in vivo.
- Получены высокоактивные и стабильные
биокомпозиты на основе коммерческих препаратов
протеиназ, ковалентно иммобилизованных на
органических матрицах. Под действием
предложенных биокатализаторов в средах с низким
содержанием воды проведен синтез пептидов
различной структуры и состава, включая новые
флуорогенные субстраты цистеиновых протеиназ
мейства папаина. Выделены и охарактеризованы две
новые протеиназы психрофильного микроорганизма
Serratia proteomaculans, которые будут в дальнейшем
использованы в мясомолочной промышленности.
Определена первичная структура цистеиновой
протеиназы из кишечника личинок жука Dermestes frischi.
Установлено, что пирофосфатаза является
субстрат-активируемым ферментом, в эффекторном
центре которого, кроме MgPP связываются также МgPCP и
РСР. Связывание LaPP в активном центре фермента
приводит к асимметрии субъединиц и
многократному увеличению скорости гидролиза при
добавлении MgPCP.
- Осуществлен синтез ряда биологически активных
пептидных производных 16-ти членных антибиотиков
макролидов (тилозина, десмикозина и
О-микаминозилтилонолида) с целью использования
их в качестве зондов для изучения топографии
растущей полипептидной цепи в туннеле рибосомы.
- Решены пространственные структуры комплексов
более чем 11 Рраз, в том числе РРазы E.coli с
пирофосфатом в присутствии трех различных ионов
металла - активирующих (Mg2+ и Mn2+) и
ингибирующего (Са2+). Разработана методика,
позволившая повысить разрешение полученных
структур до 1,1-1,2 A. Сравнительный анализ
полученных структур позволил объяснить различие
в действии данных катионов на каталитическую
активность. Выявлены структурные перестройки,
сопровождающие превращение субстрата.
- Обнаружен регуляторный центр в неорганической
РРазе I семейства. Показано, что каждая
субъединица гексамерной Е-РРазы способна
связывать 2 молекулы пирофосфата или его
аналогов. Локализован сайт модификации Е-РРазы
под действием АТР. Изучены кинетические и
термодинамические свойства мутантных РРаз с
заменами в предполагаемом центре связывания
аналогов пирофосфата.
- Осуществлен синтез биологически активных
пептидных производных 16-ти членных антибиотиков
макролидов с целью использования их в качестве
зондов для изучения топографии растущей
полипептидной цепи в туннеле рибосомы.
- Проведено сравнительное изучение различных
модифицированных протеиназ - субтилизинов и
трипсина как катализаторов синтеза пептидов в
органической среде. Показана высокая
эффективность исследуемых катализаторов для
синтеза пептидов, содержащих остатки основных и
кислых аминокислот, в том числе для получения
хромогенного субстрата каспазы.
- Выполнен большой цикл работ по аффинной
хроматографии протеиназ, предложены
биоспецифические сорбенты нового типа,
содержащие в качестве лигандов
полипептиды-антибиотики. Разработки в этой
области получили распространение в ряде
советских и зарубежных лабораторий. Выделение
более 60 чистых ферментов их различных источников
позволило систематически исследовать их
функциональные и структурные характеристики,
внести большой вклад в биохимическую
систематику протеиназ, представления об их
эволюции, а также ввести в практику ряд протеиназ
с ценными характеристиками.
- Созданы диагностикумы для ряда болезней почек у
детей, позволяющие уточнять диагноз, следить за
протеканием болезни и эффективно проводить
лечение. Разработан метод получения коллагеназы
камчатского краба. Этот фермент использован для
получения мази МОРИКРОЛ, успешно применяемой для
лечения гнойно-трофических язв, ожогов, рубцов
различной этиологии, при трансплантации кожи.
Кафедра ежегодно публикует 30-40 научных статей,
половина из которых в иностранных журналах.
Ежегодно 10-20 сотрудников кафедры участвуют в
международных научных конференциях
Научная деятельность поддерживается
многочисленными грантами, такими как: РФФИ,
Университеты России, Ведущие научные школы,
Международные гранты - INTAS, Copernicus, NATO, Howard Huges Medical
Institute, Human Frontiers и др.
Это позволяет проводить закупку современного
оборудования и реактивов, а также оказывать
материальную поддержку сотрудникам, аспирантам
и студентам кафедры.
Выпускники кафедры являются высоко
востребованными специалистами в современных
биотехнологических и фармакологических
компаниях, а также в консалтинговых
организациях.
Мы не только любим работать, но и отдыхаем
|